
实验动物与比较医学 ›› 2026, Vol. 46 ›› Issue (5): 707-715.DOI: 10.12300/j.issn.1674-5817.2025.209
许静茹1,2, 范思思1,2, 丘淑琪1, 闫娜娜1(
)(
), 范克伟1(
)
收稿日期:2025-12-10
修回日期:2026-06-11
出版日期:2026-10-25
发布日期:2026-10-16
通讯作者:
闫娜娜(1995—),女,博士,讲师,研究方向:动物病原学与免疫学。E-mail: yan@lyun.edu.cn。ORCID: 0000-0001-8550-2816作者简介:基金资助:
XU Jingru1,2, FAN Sisi1,2, QIU Shuqi1, YAN Nana1(
)(
), FAN Kewei1(
)
Received:2025-12-10
Revised:2026-06-11
Published:2026-10-25
Online:2026-10-16
Correspondence to:
摘要:
金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus,S. aureus)是一种临床高发的革兰氏阳性致病菌,可导致皮肤软组织感染、肺炎、败血症及感染性心内膜炎等疾病。耐甲氧西林金黄色葡萄球菌(methicillin-resistant Staphylococcus aureus,MRSA)的出现与流行给临床治疗带来了巨大挑战。动物模型是深入解析其致病机制、耐药机制以及评估新型抗感染策略的重要工具。皮肤软组织感染模型、骨髓炎与内置物相关感染模型、肺炎模型以及感染性心内膜炎模型是金黄色葡萄球菌感染研究中4类常见的成熟模型。本文系统阐述了这4类模型的实验动物选择依据、主流建模方法、应用场景以及各自的优势与局限性。这4类模型常用的实验动物包括小鼠、大鼠、兔、猪等。皮肤软组织感染模型造模快、成本低,但难以模拟复杂的慢性病灶;骨髓炎与内置物相关感染模型多用于模拟细菌生物膜形成及慢性感染的过程;肺炎模型多用于研究急性肺损伤与药效评价;感染性心内膜炎模型多用于研究赘生物的形成机制和评估药物对深部感染的疗效。由于实验动物与人类免疫系统存在固有差异,这些现有模型普遍存在缺陷,如多数动物模型采用了较高的细菌接种剂量,且实验周期较短,难以完全复现临床慢性感染过程等。未来可通过发展人源化动物模型及器官芯片等体外系统有效克服物种差异,并整合共病因素以提升临床相关性,以及采用多模态动态评估体系,建立非动物替代方案。本文旨在为合理选择、优化和应用金黄色葡萄球菌感染动物模型提供系统的理论参考,以期推动抗感染研究领域的发展。
中图分类号:
许静茹,范思思,丘淑琪,等. 金黄色葡萄球菌感染疾病动物模型的研究进展[J]. 实验动物与比较医学, 2026, 46(5): 707-715. DOI: 10.12300/j.issn.1674-5817.2025.209.
XU Jingru,FAN Sisi,QIU Shuqi,et al. Research Progress on Animal Models of Staphylococcus aureus Infection[J]. Laboratory Animal and Comparative Medicine, 2026, 46(5): 707-715. DOI: 10.12300/j.issn.1674-5817.2025.209.
金黄色葡萄球菌感染研究中常用实验动物的易感性、特点和适用场景
Susceptibility, characteristics, and applicable scenarios of commonly used laboratory animals in Staphylococcus aureus infection research
| 物种 Species | 主要品种/品系 Main breed/strain | 易感性与特点 Susceptibility and characteristic | 优势 Advantage | 局限性 Limitation | 典型应用场景 Typical application scenario | 参考文献 Reference |
|---|---|---|---|---|---|---|
| 小鼠 Mouse | C57BL/6、BALB/c等 | 易感,是应用最广泛的模型动物。不同品系存在差异 | 成本低、繁殖快、遗传背景清晰、免疫学与基因编辑工具齐全 | 皮肤结构、免疫应答与人类存在物种差异;骨骼微小,限制了复杂内固定模型的应用 | 皮肤软组织感染模型;肺炎模型;基础免疫机制与药物初筛 | [ |
| 大鼠 Rat | SD、Wistar等 | 易感,骨骼尺寸适中,便于标准化手术操作 | 可进行更复杂的骨科手术;成本可控 | 心血管及免疫系统与人类的相似性不及兔等动物 | 骨髓炎与内置物相关感染模型;感染性心内膜炎模型;中等通量药效评价 | [ |
| 人源化小鼠 Humanized mouse | NOG、NSG | 通过移植人类细胞或组织,构建人类免疫系统或组织微环境,能响应人源特异性致病因子 | 为研究人类特异性宿主-病原体互作及评估人源化疗法提供独特方法 | 构建技术复杂;成本高;个体间可能存在差异 | 肺炎模型;研究人类免疫细胞对感染的应答;评价靶向人类特异靶点的疫苗或药物 | [ |
| 兔 Rabbit | 新西兰白兔、日本大耳白兔等 | 对金黄色葡萄球菌多种毒力因子高度敏感。感染后病理特征(如赘生物、死骨)与人类高度一致 | 心血管解剖、骨骼尺寸及生理功能更接近人类;便于进行精细手术、系列影像学评估及多次采样 | 饲养成本较高,对麻醉药敏感,需要特殊设施;免疫工具少于小鼠 | 慢性骨髓炎模型;感染性心内膜炎模型;需要高临床吻合度的机制与治疗研究 | [ |
| 小型猪 Miniature pig | 广西巴马小型猪、普通家猪的未成年个体(如长白猪、大白猪)、哥廷根小型猪 | 易感,皮肤与免疫系统同人类高度相似,骨骼尺寸和生理结构同儿童更为接近 | 在皮肤解剖、生理及免疫反应等方面与人类高度相似,模型稳定可控 | 饲养成本较高,实验操作复杂 | 皮肤及软组织感染模型;急性血源性骨髓炎模型 | [ |
| 犬 Dog | 比格犬 | 对骨感染的病理反应(骨坏死、死骨形成)与人类高度一致 | 能很好地模拟人类骨骼的力学环境和慢性感染过程 | 饲养成本较高,伦理审查严格,实验周期长 | 高阶的抗菌药或骨修复材料临床前疗效评价 | [ |
表1
金黄色葡萄球菌感染研究中常用实验动物的易感性、特点和适用场景
Table 1
Susceptibility, characteristics, and applicable scenarios of commonly used laboratory animals in Staphylococcus aureus infection research
| 物种 Species | 主要品种/品系 Main breed/strain | 易感性与特点 Susceptibility and characteristic | 优势 Advantage | 局限性 Limitation | 典型应用场景 Typical application scenario | 参考文献 Reference |
|---|---|---|---|---|---|---|
| 小鼠 Mouse | C57BL/6、BALB/c等 | 易感,是应用最广泛的模型动物。不同品系存在差异 | 成本低、繁殖快、遗传背景清晰、免疫学与基因编辑工具齐全 | 皮肤结构、免疫应答与人类存在物种差异;骨骼微小,限制了复杂内固定模型的应用 | 皮肤软组织感染模型;肺炎模型;基础免疫机制与药物初筛 | [ |
| 大鼠 Rat | SD、Wistar等 | 易感,骨骼尺寸适中,便于标准化手术操作 | 可进行更复杂的骨科手术;成本可控 | 心血管及免疫系统与人类的相似性不及兔等动物 | 骨髓炎与内置物相关感染模型;感染性心内膜炎模型;中等通量药效评价 | [ |
| 人源化小鼠 Humanized mouse | NOG、NSG | 通过移植人类细胞或组织,构建人类免疫系统或组织微环境,能响应人源特异性致病因子 | 为研究人类特异性宿主-病原体互作及评估人源化疗法提供独特方法 | 构建技术复杂;成本高;个体间可能存在差异 | 肺炎模型;研究人类免疫细胞对感染的应答;评价靶向人类特异靶点的疫苗或药物 | [ |
| 兔 Rabbit | 新西兰白兔、日本大耳白兔等 | 对金黄色葡萄球菌多种毒力因子高度敏感。感染后病理特征(如赘生物、死骨)与人类高度一致 | 心血管解剖、骨骼尺寸及生理功能更接近人类;便于进行精细手术、系列影像学评估及多次采样 | 饲养成本较高,对麻醉药敏感,需要特殊设施;免疫工具少于小鼠 | 慢性骨髓炎模型;感染性心内膜炎模型;需要高临床吻合度的机制与治疗研究 | [ |
| 小型猪 Miniature pig | 广西巴马小型猪、普通家猪的未成年个体(如长白猪、大白猪)、哥廷根小型猪 | 易感,皮肤与免疫系统同人类高度相似,骨骼尺寸和生理结构同儿童更为接近 | 在皮肤解剖、生理及免疫反应等方面与人类高度相似,模型稳定可控 | 饲养成本较高,实验操作复杂 | 皮肤及软组织感染模型;急性血源性骨髓炎模型 | [ |
| 犬 Dog | 比格犬 | 对骨感染的病理反应(骨坏死、死骨形成)与人类高度一致 | 能很好地模拟人类骨骼的力学环境和慢性感染过程 | 饲养成本较高,伦理审查严格,实验周期长 | 高阶的抗菌药或骨修复材料临床前疗效评价 | [ |
金黄色葡萄球菌主要疾病模型的构建策略与特点比较
Comparison of construction strategies and characteristics of the main disease models of Staphylococcus aureus
| 疾病模型 Disease model | 主流建模方法 Mainstream modeling method | 针对的核心科学问题 Core scientific questions addressed | 主要局限 Main limitation |
|---|---|---|---|
| 皮肤软组织感染 Skin and soft tissue infection | 皮下脓肿模型(1×10⁶~1×10⁸ CFU,封闭腔室); 划伤/破损接种法模型(破坏屏障后接种); 烫伤感染模型(可控深度烫伤后接种) | 细菌初始定植与侵袭机制;局部抗菌/抗生物膜药物疗效初筛;局部天然免疫应答的动态变化 | 对慢性复杂创面(如糖尿病足溃疡)模拟能力差;皮肤免疫存在物种差异 |
| 骨髓炎与内置物相关感染 Osteomyelitis and implant-associated infection | 内置物预先污染法(带生物膜植入物,≥1×107 CFU); 开放性骨折污染法(骨折内固定+同期接种); 骨缺损感染法(临界尺寸骨缺损+细菌接种) | 生物膜形成、持留及治疗;细菌感染与复发机制;抗生物膜涂层或材料功效评价 | 接种菌量高,与临床低生物负载不符;难以复现人类疾病的慢性进程;技术门槛高,手术结果变异性大 |
| 肺炎 Pneumonia | 鼻滴入法(自主吸入,分布不均); 气管滴注法(直接肺内递送,均一性高); 气溶胶肺递送法(雾化吸入,分布均匀) | 急性肺损伤与免疫细胞募集机制;流感后继发感染研究;肺泡区病原体-宿主相互作用 | 多为急性致死性模型,非慢性/持续性感染;不能完全模拟自然气溶胶获得途径 |
| 感染性心内膜炎 Infective endocarditis | 导管诱导损伤法(啮齿类)(非瓣膜导管,静脉注射); 超声引导瓣膜损伤法(兔)(直接瓣膜损伤,临床相关性高) | 赘生物形成机制与病理研究;深部、生物膜相关感染的抗生素疗效评价 | 需要高超的外科技术;大鼠模型生理结构与人类有差异,兔模型成本较高 |
表2
金黄色葡萄球菌主要疾病模型的构建策略与特点比较
Table 2
Comparison of construction strategies and characteristics of the main disease models of Staphylococcus aureus
| 疾病模型 Disease model | 主流建模方法 Mainstream modeling method | 针对的核心科学问题 Core scientific questions addressed | 主要局限 Main limitation |
|---|---|---|---|
| 皮肤软组织感染 Skin and soft tissue infection | 皮下脓肿模型(1×10⁶~1×10⁸ CFU,封闭腔室); 划伤/破损接种法模型(破坏屏障后接种); 烫伤感染模型(可控深度烫伤后接种) | 细菌初始定植与侵袭机制;局部抗菌/抗生物膜药物疗效初筛;局部天然免疫应答的动态变化 | 对慢性复杂创面(如糖尿病足溃疡)模拟能力差;皮肤免疫存在物种差异 |
| 骨髓炎与内置物相关感染 Osteomyelitis and implant-associated infection | 内置物预先污染法(带生物膜植入物,≥1×107 CFU); 开放性骨折污染法(骨折内固定+同期接种); 骨缺损感染法(临界尺寸骨缺损+细菌接种) | 生物膜形成、持留及治疗;细菌感染与复发机制;抗生物膜涂层或材料功效评价 | 接种菌量高,与临床低生物负载不符;难以复现人类疾病的慢性进程;技术门槛高,手术结果变异性大 |
| 肺炎 Pneumonia | 鼻滴入法(自主吸入,分布不均); 气管滴注法(直接肺内递送,均一性高); 气溶胶肺递送法(雾化吸入,分布均匀) | 急性肺损伤与免疫细胞募集机制;流感后继发感染研究;肺泡区病原体-宿主相互作用 | 多为急性致死性模型,非慢性/持续性感染;不能完全模拟自然气溶胶获得途径 |
| 感染性心内膜炎 Infective endocarditis | 导管诱导损伤法(啮齿类)(非瓣膜导管,静脉注射); 超声引导瓣膜损伤法(兔)(直接瓣膜损伤,临床相关性高) | 赘生物形成机制与病理研究;深部、生物膜相关感染的抗生素疗效评价 | 需要高超的外科技术;大鼠模型生理结构与人类有差异,兔模型成本较高 |
| [1] |
于灵芝, 谢建芸, 冯丽萍, 等. 金黄色葡萄球菌荧光定量PCR检测方法的建立及其在大鼠、小鼠粪便检测中的应用[J]. 实验动物与比较医学, 2023, 43(5): 566-573. DOI: 10.12300/j.issn.1674-5817.2023.022.
|
|
YU L Z, XIE J Y, FENG L P, et al. Establishment of fluorescence qPCR method for detection of Staphylococcus aureus and its application in feces detection of rats and mice[J]. Lab Anim Comp Med, 2023, 43(5): 566-573. DOI: 10.12300/j.issn.1674-5817.2023.022.
|
|
| [2] |
王娟, 汤英贤, 陈凌娟, 等. 血流感染金黄色葡萄球菌不同耐药株生物膜形成能力和毒力关系研究[J]. 国际检验医学杂志, 2025, 46(14): 1753-1757, 1763. DOI: 10.3969/j.issn.1673-4130.2025.14.016.
|
|
WANG J, TANG Y X, CHEN L J, et al. Study on the relationship between biofilm formation ability and virulence of various drug-resistant strains of Staphylococcus aureus in bloodstream infections[J]. Int J Lab Med, 2025, 46(14): 1753-1757, 1763. DOI: 10.3969/j.issn.1673-4130.2025.14.016.
|
|
| [3] |
张文静, 吕若一, 修德冕, 等. 畜禽金黄色葡萄球菌流行现状和中草药防控进展[J]. 微生物学通报, 2024, 51(8): 2753-2770. DOI: 10.13344/j.microbiol.china.230966.
|
|
ZHANG W J, LÜ R Y, XIU D M, et al. Current situation of Staphylococcus aureus infection in livestock and poultry and progress in the prevention and control with Chinese herbal medicines[J]. Microbiol China, 2024, 51(8): 2753-2770. DOI: 10.13344/j.microbiol.china.230966.
|
|
| [4] |
ZHOU N, SUN Y N, REN X, et al. Intradermal injection of Cutibacterium acnes and Staphylococcus: a pustular acne-like murine model[J]. J Cosmet Dermatol, 2024, 23(7): 2478-2489. DOI: 10.1111/jocd.16279.
|
| [5] |
HUO Q R, DING J Y, ZHOU H X, et al. Disruption of Morrbid alleviates autoinflammatory osteomyelitis in Pstpip2-deficient mice[J]. Dis Models Mech, 2025, 18(7): dmm052176. DOI: 10.1242/dmm.052176.
|
| [6] |
SAMARASINGHE A E, RANDELL S H, KULKARNI H S, et al. Best practices in the development and use of experimental models of bacterial pneumonia: an official American Thoracic Society workshop report[J]. Am J Respir Cell Mol Biol, 2025, 73(2): 178-199. DOI: 10.1165/rcmb.2025-0322st.
|
| [7] |
WANG Y, CHENG L I, HELFER D R, et al. Mouse model of hematogenous implant-related Staphylococcus aureus biofilm infection reveals therapeutic targets[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2017, 114(26): E5094-E5102. DOI: 10.1073/pnas. 1703427114.
|
| [8] |
吴婧艺, 李扬, 钱亚男, 等. 耐甲氧西林金黄色葡萄球菌感染慢性骨髓炎大鼠胫骨骨缺损模型的构建与评估[J]. 湖南中医药大学学报, 2025, 45(10): 1831-1838. DOI: 10.3969/j.issn.1674-070X.2025.10.005.
|
|
WU J Y, LI Y, QIAN Y N, et al. Establishment and evaluation of a chronic osteomyelitis model with a tibial bone defect induced by methicillin-resistant Staphylococcus aureus in rat[J]. J Hunan Univ Chin Med, 2025, 45(10): 1831-1838. DOI: 10.3969/j.issn.1674-070X.2025.10.005.
|
|
| [9] |
孙智, 隋钧皓, 章浩. SD大鼠股骨慢性骨髓炎模型构建与评价[J]. 海军军医大学学报, 2024, 45(5): 552-557. DOI: 10.16781/j.CN31-2187/R.20240078.
|
|
SUN Z, SUI J H, ZHANG H. Construction and evaluation of an animal model of chronic osteomyelitis of femur in SD rats[J]. Acad J Nav Med Univ, 2024, 45(5): 552-557. DOI: 10.16781/j.CN31-2187/R.20240078.
|
|
| [10] |
孟治平, 路曼琪, 苏文强, 等. 盐酸小檗碱粉雾剂的制备及其对金黄色葡萄球菌肺炎的作用研究[J]. 中草药, 2020, 51(2): 348-355. DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2020.02.010.
|
|
MENG Z P, LU M Q, SU W Q, et al. Preparation of berberine hydrochloride dry powder inhalation and its effect on Staphylococcus aureus pneumonia[J]. Chin Tradit Herb Drugs, 2020, 51(2): 348-355. DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2020.02.010.
|
|
| [11] |
LIANG H Y, WANG Y D, LIU F, et al. The application of rat models in Staphylococcus aureus infections[J]. Pathogens, 2024, 13(6): 434. DOI: 10.3390/pathogens13060434.
|
| [12] |
WANG H, PARKER D. Improved humanized mouse model of Staphylococcus aureus infection[J]. Mucosal Immunol, 2025, 18(4): 911-917. DOI: 10.1016/j.mucimm.2025.05.001.
|
| [13] |
MALACHOWA N, MCGUINNESS W, KOBAYASHI S D, et al. Toward optimization of a rabbit model of Staphylococcus aureus (USA300) skin and soft tissue infection[J]. Microbiol Spectr, 2022, 10(2): e02716-e02721. DOI: 10.1128/spectrum. 02716-21.
|
| [14] |
刘金月, 章猛奇, 卿明松, 等. 金黄色葡萄球菌性骨髓炎动物模型构建的研究与进展[J]. 中国组织工程研究, 2020, 24(14): 2256-2262. DOI: 10.3969/j.issn.2095-4344.2600.
|
|
LIU J Y, ZHANG M Q, QING M S, et al. Research progress in constructing animal models of Staphylococcus aureus-associated osteomyelitis[J]. Chin J Tissue Eng Res, 2020, 24(14): 2256-2262. DOI: 10.3969/j.issn.2095-4344.2600.
|
|
| [15] |
RAŠKA F, LIPOVÝ B, KOBZOVÁ Š, et al. Development of a porcine model of skin and soft-tissue infection caused by Staphylococcus aureus, including methicillin-resistant strains suitable for testing topical antimicrobial agents[J]. Anim Models Exp Med, 2025, 8(3): 544-557. DOI: 10.1002/ame2.12495.
|
| [16] |
JOHANSEN L K, FREES D, AALBAEK B, et al. A porcine model of acute, haematogenous, localized osteomyelitis due to Staphylococcus aureus: a pathomorphological study[J]. APMIS, 2011, 119(2): 111-118. DOI: 10.1111/j.1600-0463.2010. 02700.x.
|
| [17] |
WANG R N, LI H, YI B, et al. Enhanced biofilm infiltration by drug-laden coacervate for treating refractory infections[J]. Adv Mater, 2026, 38(12): e21500. DOI: 10.1002/adma. 202521500.
|
| [18] |
杨玉琴, 丁忆远, 彭秀华, 等. 金黄色葡萄球菌感染动物模型的研究进展[J]. 实验动物与比较医学, 2011, 31(6): 473-477. DOI: 10.3969/j.issn.1674-5817.2011.06.018.
|
|
YANG Y Q, DING Y Y, PENG X H, et al. Research progress on establishment of animal model with Staphylococcus aureus infection[J]. Lab Anim Comp Med, 2011, 31(6): 473-477. DOI: 10.3969/j.issn.1674-5817.2011.06.018.
|
|
| [19] |
DING B Y, LI Q T, GUO M Q, et al. Prevention of dermal abscess formation caused by Staphylococcus aureus using phage JD007 in nude mice[J]. Front Microbiol, 2018, 9: 1553. DOI: 10.3389/fmicb.2018.01553.
|
| [20] |
LU Y F, WANG Y R, WANG J, et al. Phage endolysin LysP108 showed promising antibacterial potential against methicillin-resistant Staphylococcus aureus[J]. Front Cell Infect Microbiol, 2021, 11: 668430. DOI: 10.3389/fcimb.2021.668430.
|
| [21] |
WEN H, ZHOU W Y, WU Y, et al. Effective treatment of a broad-host-range lytic phage SapYZU15 in eliminating Staphylococcus aureus from subcutaneous infection[J]. Microbiol Res, 2023, 276: 127484. DOI: 10.1016/j.micres.2023. 127484.
|
| [22] |
YAO Z Z, XIANG M Q, YANG Y, et al. A new antibacterial with anti-inflammatory properties promotes wound healing through inhibiting cGAS/STING/NF-κB/IRF3 pathway[J]. Int Immunopharmacol, 2024, 143: 113303. DOI: 10.1016/j.intimp. 2024.113303.
|
| [23] |
HERNANDEZ A, PATIL N K, BOHANNON J K. A murine model of full-thickness scald burn injury with subsequent wound and systemic bacterial infection[M]//Sepsis. New York, NY: Springer US, 2021: 111-120. DOI: 10.1007/978-1-0716-1488-4_10.
|
| [24] |
李雨帆, 林明玥, 王晨鑫, 等. 显微CT在兔胫骨骨髓炎建模过程中的应用[J]. 中国组织工程研究, 2022, 26(18): 2874-2880.
|
|
LI Y F, LIN M Y, WANG C X, et al. Application of micro-CT in rabbit tibial osteomyelitis modeling[J]. Chin J Tissue Eng Res, 2022, 26(18): 2874-2880.
|
|
| [25] |
冯建波, 李陈诚, 刘金月, 等. 金黄色葡萄球菌生物膜克氏针置入建立创伤性大鼠骨髓炎模型[J]. 中国组织工程研究, 2022, 26(5): 700-705.
|
|
FENG J B, LI C C, LIU J Y, et al. Implantation of Kirschner wire with Staphylococcus aureus biofilm establishes a traumatic osteomyelitis model in rats[J]. Chin J Tissue Eng Res, 2022, 26(5): 700-705.
|
|
| [26] |
DAO A K, O'DONOHUE A K, VASILJEVSKI E R, et al. Murine models of orthopedic infection featuring Staphylococcus aureus biofilm[J]. J Bone Joint Infect, 2023, 8(2): 81-89. DOI: 10.5194/jbji-8-81-2023.
|
| [27] |
GAO T, LIN J Q, ZHANG C Q, et al. Is intracellular Staphylococcus aureus associated with recurrent infection in a rat model of open fracture?[J]. Bone Jt Res, 2020, 9(2): 71-76. DOI: 10.1302/2046-3758.92.BJR-2019-0201.R1.
|
| [28] |
ZHANG Y H, YANG F, SUN D, et al. rFSAV promotes Staphylococcus aureus-infected bone defect healing via IL-13- mediated M2 macrophage polarization[J]. Clin Immunol, 2023, 255: 109747. DOI: 10.1016/j.clim.2023.109747.
|
| [29] |
ZHOU Y, NIU C, MA B, et al. Inhibiting PSMα-induced neutrophil necroptosis protects mice with MRSA pneumonia by blocking the agr system[J]. Cell Death Dis, 2018, 9: 362. DOI: 10.1038/s41419-018-0398-z.
|
| [30] |
赵玥, 周冬生, 杨文慧, 等. 耐甲氧西林金黄色葡萄球菌感染小鼠致肺炎的模型构建与特征分析[J]. 中国人兽共患病学报, 2023, 39(5): 447-454. DOI: 10.3969/j.issn.1002-2694.2023.00.042.
|
|
ZHAO Y, ZHOU D S, YANG W H, et al. Model construction and characteristic analysis of pneumonia induced by methicillin-resistant Staphylococcus aureus infection in mice[J]. Chin J Zoonoses, 2023, 39(5): 447-454. DOI: 10.3969/j.issn.1002-2694.2023.00.042.
|
|
| [31] |
YAMASHITA Y, NAGAOKA K, KIMURA H, et al. Efficacy of azithromycin in a mouse pneumonia model against hospital-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus[J]. Antimicrob Agents Chemother, 2019, 63(9): e00149-19. DOI: 10.1128/aac.00149-19.
|
| [32] |
陈越, 逄崇杰. 感染性心内膜炎的诊断与治疗进展[J]. 中国感染与化疗杂志, 2025, 25(2): 224-228. DOI: 10.11659/jjssx.11E022012.
|
|
CHEN Y, PANG C J. Research progress in the diagnosis and treatment of infective endocarditis[J]. Chin J Infect Chemother, 2025, 25(2): 224-228. DOI: 10.11659/jjssx.11E022012.
|
|
| [33] |
MILLER W R, SINGH K V, ARIAS C A, et al. Adjunctive clavulanic acid abolishes the cefazolin inoculum effect in an experimental rat model of methicillin-sensitive Staphylococcus aureus endocarditis[J]. Antimicrob Agents Chemother, 2018, 62(11): e01158-18. DOI: 10.1128/aac.01158-18.
|
| [34] |
LEBEAUX D, CHAUHAN A, RENDUELES O, et al. From in vitro to in vivo models of bacterial biofilm-related infections[J]. Pathogens, 2013, 2(2): 288-356. DOI: 10.3390/pathogens2020288.
|
| [35] |
WANG M L, ZHANG Y, FAN M, et al. A rabbit model of right-sided Staphylococcus aureus endocarditis created with echocardiographic guidance[J]. Cardiovasc Ultrasound, 2013, 11(1): 3. DOI: 10.1186/1476-7120-11-3.
|
| [36] |
YANG B S, SU J W, WU J C, et al. Macrophage-derived amphiregulin induces myofibroblast transition in adipogenic lineage precursors near Staphylococcus aureus abscess in bone marrow[J]. Nat Commun, 2025, 16: 8409. DOI: 10.1038/s41467-025-63551-7.
|
| [37] |
CHEN Z H, JIN Q Y, ZHONG J Q, et al. Staphylococcus aureus blocks host autophagy through circSyk/miR-5106/Sik3 axis to promote progression of bone infection[J]. PLoS Pathog, 2025, 21(1): e1012896. DOI: 10.1371/journal.ppat.1012896.
|
| [38] |
陈体, 段瑶, 张晓洁, 等. 匹莫齐特对金黄色葡萄球菌的体外和体内抗菌研究[J]. 中国感染控制杂志, 2023, 22(12): 1475-1482. DOI: 10.12138/j.issn.1671-9638.20234213.
|
|
CHEN T, DUAN Y, ZHANG X J, et al. In vitro and in vivo antimicrobial activity of pimozide against Staphylococcus aureus[J]. Chin J Infect Control, 2023, 22(12): 1475-1482. DOI: 10.12138/j.issn.1671-9638.20234213.
|
|
| [39] |
THAKARE R, SHUKLA M, KAUL G, et al. Repurposing disulfiram for treatment of Staphylococcus aureus infections[J]. Int J Antimicrob Agents, 2019, 53(6): 709-715. DOI: 10.1016/j.ijantimicag.2019.03.024.
|
| [40] |
ABAVISANI M, KHOSHROU A, KHAYAMI R, et al. Preclinical evaluation of repositioned non-antibiotic agents against Staphylococcus aureus: a network meta-analysis of survival outcomes[J]. World J Microbiol Biotechnol, 2025, 41(12): 480. DOI: 10.1007/s11274-025-04705-z.
|
| [41] |
GAO X Y, ZHENG Y L, WANG X Y, et al. A multivalent mRNA-LNP cocktail vaccine confers superior efficacy against Staphylococcus aureus infection in murine models[J]. npj Vaccines, 2025, 10: 210. DOI: 10.1038/s41541-025-01244-4.
|
| [42] |
WANG X L, DOU Y, HU J C, et al. Conserved moonlighting protein pyruvate dehydrogenase induces robust protection against Staphylococcus aureus infection[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2024, 121(36): e2321939121. DOI: 10.1073/pnas. 2321939121.
|
| [43] |
MCNEELY T B, SHAH N A, FRIDMAN A, et al. Mortality among recipients of the Merck V710 Staphylococcus aureus vaccine after postoperative S. aureus infections: an analysis of possible contributing host factors[J]. Hum Vaccin Immunother, 2014, 10(12): 3513-3516. DOI: 10.4161/hv.34407.
|
| [44] |
PRABHAKARA R, HARRO J M, LEID J G, et al. Murine immune response to a Chronic Staphylococcus aureus biofilm infection[J]. Infect Immun, 2011, 79(4): 1789-1796. DOI: 10.1128/iai.01386-10.
|
| [45] |
MASTERS E A, RICCIARDI B F, DE MESY BENTLEY K L, et al. Skeletal infections: microbial pathogenesis, immunity and clinical management[J]. Nat Rev Microbiol, 2022, 20(7): 385-400. DOI: 10.1038/s41579-022-00686-0.
|
| [46] |
LIU F L, WU K X, SUN J Y, et al. Rapid generation of ACE2 humanized inbred mouse model for COVID-19 with tetraploid complementation[J]. Natl Sci Rev, 2021, 8(2): nwaa285. DOI: 10.1093/nsr/nwaa285.
|
| [47] |
黄雪桓, 赵彩慧, 许永宁, 等. 2型糖尿病自发胰腺癌KPC小鼠新型共病模型的构建及评价[J]. 临床肝胆病杂志, 2026, 42(4): 908-917. DOI: 10.12449/JCH260420.
|
|
HUANG X H, ZHAO C H, XU Y N, et al. Construction and evaluation of a novel KPC mouse model of type 2 diabetes mellitus comorbid with spontaneous pancreatic cancer[J]. J Clin Hepatol, 2026, 42(4): 908-917. DOI: 10.12449/JCH260420.
|
|
| [48] |
TSENG Y T, ZHAO B H, DING H, et al. Systematic evaluation of a predator stress model of depression in mice using a hierarchical 3D-motion learning framework[J]. Transl Psychiatry, 2023, 13: 178. DOI: 10.1038/s41398-023-02481-8.
|
| [1] | 何苗, 张旭兴, 吴刚, 周毅, 饶豪, 胡翔宇. 基于中西医临床病证特点的腰椎管狭窄症动物模型分析[J]. 实验动物与比较医学, 2026, 46(4): 541-552. |
| [2] | 潘林琴, 邓向亮, 罗云霞. 缺血性脑卒中动物模型的中西医整合转化研究进展[J]. 实验动物与比较医学, 2026, 46(3): 344-356. |
| [3] | 中国研究型医院学会医学动物实验专家委员会, 中国医药生物技术协会再生医学分会, 韩发彬, 陈琳, 陈志国, 卢明, 李英俊. 帕金森病药物和干细胞治疗临床前动物实验模型选择指南(2026年版)[J]. 实验动物与比较医学, 2026, 46(2): 153-177. |
| [4] | 李慧. 生物语言学动物模型研究进展[J]. 实验动物与比较医学, 2026, 46(2): 297-305. |
| [5] | 杨琳, 金梦, 吴汗青, 李顺, 周晓辉. 痘苗病毒天坛株感染AG6小鼠脑病模型的建立与初步分析[J]. 实验动物与比较医学, 2026, 46(1): 3-10. |
| [6] | 廖望钥, 雷爽, 李璇, 郭闵, 周若然. 注意缺陷多动障碍动物模型文献分析及效度评价[J]. 实验动物与比较医学, 2026, 46(1): 66-80. |
| [7] | 陈子宜, 孙红燕, 康品方, 武文娟. 肺动脉高压动物模型构建方法及新型技术研究进展[J]. 实验动物与比较医学, 2026, 46(1): 81-93. |
| [8] | 杨韵蓉, 吴文郁, 谭跃, 严国锋, 李垚, 卢今. 脑卒中动物模型构建与评价方法评述[J]. 实验动物与比较医学, 2026, 46(1): 94-106. |
| [9] | 刘松, 莫倩茹, 王瑾, 崔颖, 田铃. 黑水虻的主要生物学特性及其作为模式生物的开发应用前景[J]. 实验动物与比较医学, 2025, 45(6): 803-809. |
| [10] | 雷林蓓, 万小娟, 谢婧, 刘雨新, 邹节新, 谢宪兵. 无菌蜜蜂在生物医学研究中的应用、优势与挑战[J]. 实验动物与比较医学, 2025, 45(6): 784-793. |
| [11] | 王笑铭, 孟晨晨, 范鹿, 李艳阳, 张军平, 吕仕超. 中医证候类动物模型构建方法概述[J]. 实验动物与比较医学, 2025, 45(5): 596-610. |
| [12] | 高超奇, 祝志波, 孙显东. 大鼠血管重构模型的应用进展与分类分析[J]. 实验动物与比较医学, 2025, 45(5): 542-550. |
| [13] | 刘子琪, 李云英, 李钦, 李元涵, 何芳雁, 温伟波. 脾胃虚寒型胃溃疡动物模型研究进展[J]. 实验动物与比较医学, 2025, 45(5): 574-585. |
| [14] | 刘洋, 程来洋, 郭中坤. 中医病症结合的围绝经期综合征动物模型研究进展[J]. 实验动物与比较医学, 2025, 45(5): 586-595. |
| [15] | 中国研究型医院学会医学动物实验专家委员会, 中国研究型医院学会神经再生与组织器官损伤修复专业委员会, 中国解剖学会工程解剖学分会. 椎间盘退行性病变的临床前研究动物模型选择指南(2025年版)[J]. 实验动物与比较医学, 2025, 45(5): 524-541. |
| 阅读次数 | ||||||
|
全文 |
|
|||||
|
摘要 |
|
|||||